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从头合成与补救合成途径解析HAT筛选为何能筛出杂交瘤细胞

浏览次数:17 发布日期:2026-10-29  来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负
HAT 筛选原理|杂交瘤细胞为什么能在 HAT 培养基中活下来

摘要:HAT 筛选利用嘌呤与嘧啶的补救合成途径,把杂交瘤细胞从骨髓瘤细胞和未融合脾细胞中区分出来。本文讲清其中的酶学逻辑。

关键词:HAT 筛选、HAT 培养基、杂交瘤细胞、骨髓瘤细胞、单克隆抗体、杂交瘤细胞培养

HAT 培养基含次黄嘌呤(H)、氨基蝶呤(A)、胸腺嘧啶(T)。三个字母对应两套 DNA 合成途径,理解这两套途径的分工,就能理解筛选为什么成立。

正常细胞有两条路:从头合成,以及利用现成碱基的补救合成。从头合成以氨基酸为原料,经一系列酶促反应生成嘌呤与嘧啶,其中二氢叶酸还原酶是关键酶之一;补救途径则直接把培养液中现成的次黄嘌呤与胸腺嘧啶接上去,需要 HGPRT 与胸腺嘧啶激酶。两条路平时并行运转,缺一条还能靠另一条维持。

氨基蝶呤抑制二氢叶酸还原酶,从头合成被切断,细胞只能依赖补救途径。此时谁有 HGPRT、谁能利用外源碱基,就成了生死线。HAT 中的次黄嘌呤与胸腺嘧啶正是为补救途径提供的底物,它们不是营养补充,而是给有酶的一方留出的通路。理解了这一点,也就明白为什么缺料与足料对筛选结果的影响并不相同。

骨髓瘤细胞(NS-1、SP2/0)是 HGPRT 缺陷株,补救途径不通,在 HAT 中死亡。未融合的脾细胞虽有 HGPRT,但在体外不能长期增殖,逐渐消失。杂交瘤细胞从脾细胞继承了 HGPRT,从骨髓瘤细胞继承了无限增殖能力,成为能存活并扩增的那一类细胞。

HAT 筛选的原理:从头合成途径与补救合成途径
图1:HAT 筛选的原理:从头合成途径与补救合成途径

这套设计有一个常被忽略的前提:筛选是负向的。它不挑出能分泌目标抗体的细胞,只淘汰掉不能活的细胞。因此 HAT 筛选之后,孔里能长的克隆仍然混杂,还需要一轮基于抗体特异性的检测。把 HAT 当成阳性筛选,是初学者常见的误读。

还要区分 HAT 与 HT。HT 只含次黄嘌呤与胸腺嘧啶,不含氨基蝶呤,用于筛选后的恢复培养——此时细胞不必继续承受氨基蝶呤的压力,但仍需要补救途径的底物。若把 HT 当作 HAT 使用,等于没有做筛选,未融合的骨髓瘤细胞会在压力解除后重新长起来。

筛选周期取决于细胞状态。一般在 HAT 中维持两周左右,期间可视情况半量换液;待孔内出现可见集落、且未融合细胞基本消失后再转出。转出过早,残留的缺陷株会混进来;转出过晚,细胞长期处在代谢压力下,状态会变差,扩增阶段需要更长时间恢复。

配制与保存上还有两点。氨基蝶呤对光敏感,含 HAT 的培养基应避光保存,配制后不宜久置;HAT 各组分的浓度是按补救途径的需求设定的,自行加量不会提高筛选效果,反而可能掩盖部分缺陷株的表现。

值得一提的是,氨基蝶呤的抑制作用是可逆的。撤去后从头合成通路会逐步恢复,这也是筛选结束后转回常规培养基可行的原因。但恢复需要时间,转出后短期内细胞仍偏脆弱,扩增阶段不宜立即提高传代比例。

上海曼博生物可提供 Hybriboost 促杂交瘤细胞生长剂及 HAT 筛选阶段的技术支持。该产品仅面向科研用途,不得用于人体临床诊断或治疗。

发布者:上海曼博生物医药科技有限公司
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E-mail:info@mine-bio.com

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