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比率成像显微镜Inscoper liveRATIO在监测T细胞活化的应用

浏览次数:2833 发布日期:2022-5-25  来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负
使用 Inscoper liveRATIO活钙成像监测 T 细胞活化
 
当受到环境刺激时,许多细胞类型使用钙信号进行细胞内信息处理并通过激活特定基因表达程序来诱导适当的生物反应。例如,钙瞬变负责免疫细胞的激活。在本应用说明中,我们将对 γδ T 细胞中的钙瞬变进行成像,以表征它们在磷酸化抗原呈递后的活化。所有这些实验都是使用 Inscoper liveRATIO 实现的,这是一种为比率成像量身定制的解决方案。

T淋巴细胞中的钙信号
从细胞外到细胞内的信号转导由第二信使介导。这些细胞信号传导的关键参与者可能是核苷酸、脂质、自由基或离子。它们都与特定目标结合以诱导具有特异性的下游信号。例如,离子具有在信号诱导后诱导快速响应的特性。钙是一种普遍存在的次级信使,可调节多种途径,如细胞存活、增殖、激活、神经发生、细胞运动、肌肉收缩或神经元突触传递(Paemeleire 等人,2000 年; 贝里奇等人,2000,2003; 克拉彭,2007;格林伯格和康纳思,2012; 休莫等人,2018;Zumerle 等人,2019 年)。
 
钙在 T 细胞的活化中起主要作用。这些淋巴细胞是一类在适应性免疫反应中发挥重要作用的白细胞,具有在其表面呈递 T 细胞受体 (TCR) 以检测抗原存在的特殊性。在基础条件下,静息淋巴细胞维持细胞内低浓度的钙(维格和基内特,2009 年)。然而,TCR 对抗原的识别会诱导其活化,其特征是细胞内钙水平的快速增加。
 
激活的 T 细胞然后能够根据其类型参与免疫反应:细胞毒性 T (CD8+) 细胞破坏受感染的细胞/病原体,辅助 T (CD4+) 细胞激活其他免疫因子,调节性 T 细胞 (Treg) 阻止激活在自身免疫淋巴细胞中,自然杀伤 T 细胞 (NKT) 分泌细胞因子并裂解抗原靶点。
其他一些 T 细胞被认为是“非常规的”,如 MAIT 或 γδ T 细胞。所有这些细胞类型的协调对于免疫反应的成功是必要的。
 
淋巴细胞是免疫防御机制的核心组成部分。它们的激活是免疫反应所需的关键步骤之一。可以使用比率成像监测钙瞬变来探索这种复杂的生理现象(巴拉戈帕兰等人, 2011). 这项技术可以为研究人员提供一种提高对免疫细胞激活的理解和探索病理生理障碍的方法

INSCOPER LIVERATIO,比例成像的现代多功能解决方案
Inscoper liveRATIO 是用于比率成像的完整显微镜解决方案。该产品由与生命科学中使用的高级视频显微镜兼容的软件和硬件包组成(图 1)
 
图 1:Inscoper 软件界面
用于可视化采集序列的 Inscoper 用户界面概述。在这里,细胞用 Fura-2 标记。可以使用专用于比率成像的 LUT 观察图像。大量表格可用于选择 ROI(感兴趣的区域)。这些区域将用于监测原始和合理化荧光信号的演变。所有生成的数据都可以导出为.tif 的图像、.csv 的图形和.avi 的视频。元数据链接到每个图像。
Inscoper liveRATIO 结合了一个专门设计的电子单元来控制显微镜支架和第三方设备,通过改进的技术性能、完整的系统集成和易用性为比例应用提供了全新的用户体验。 Inscoper 技术的核心在控制整个显微镜系统时消除了任何软件延迟。与传统方法相比,它提高了时间分辨率,这是活细胞成像应用的主要优势。除了控制系统中的不同电动元件外,Inscoper liveRATIO 还为研究人员提供了一个优雅且功能齐全的图形界面,以监测其生物样品中荧光信号的演变。实时图像处理(图 2)。 Inscoper liveRATIO 是用于 FRET 实验和比率成像(离子浓度监测、细胞内 pH 测量、…) 使用荧光探针。
 
 
图 2:配备 Inscoper liveRATIO 的钙比率成像实验装置

钙瞬变的比例成像​
目标:
在这里,我们想要表征磷酸抗原呈递后 γδ T 细胞的激活。为此,我们将监测淋巴细胞中的钙瞬变。
 
材料:
该实验是与显微镜设备 MicroPICell(法国南特)合作实现的。使用配备 HC Plan Apo 20x 0.70 NA(506166;Leica)的 Leica DMI 6000B 显微镜(Leica,Wetzlar,Germany)(图 2)。对于这个实验,相机是数字 CMOS Orca Flash 4.0(C11440;Hamamatsu Photonics,Hamamatsu,日本),光引擎来自 CoolLED(pE-800富拉;CoolLED,Andover,UK)。使用 Inscoper liveRATIO (INSCOPER, Cesson-Sévigné, France) 进行显微镜控制、采集和实时图像处理。
 
方法:
γδ T 细胞用 Fura-2 AM(F1201;Thermofisher,Waktham,MA,USA)标记,这是一种对游离细胞内钙具有高亲和力的荧光探针。其在低钙浓度(最大激发 = 362 nm,最大发射 = 512 nm)下的光谱特性与高钙条件(最大激发 = 335 nm,最大发射 = 505 nm)下的光谱特性不同。 340nm 和 380nm 的激发可以分别用钙结合和游离荧光探针成像。在采集过程中,将磷酸化抗原手动添加到淋巴细胞培养基中,并监测荧光。使用 DMSO(用于 Fura-2 稀释)作为阴性对照也进行了相同的实验。
结果:
许多染料根据其特性(结合钙或在质膜上被动扩散的能力、激发/发射波长、强度、亮度和稳定性)用于进行钙成像。此外,可以使用非比率(更方便和更快,但不适合量化)或比率方法(更复杂但完全适合定量测量)进行成像。
 
Fura-2 AM 在本实验中是首选,因为 (i) 它的比例特性和(ii)其扩散穿过质膜的能力。简要地,Fura-2 AM 需要用两种不同的波长依次激发,340(结合钙)和 380 nm(游离),在 510 nm 处只有一次发射。两个信号都被合理化以进行量化。

在基础条件下,所有静息淋巴细胞中的细胞内钙浓度仍然很低。当将 DMSO 或磷酸化抗原 (PA) 添加到细胞培养基中时,观察到比率 340/380 的轻微且短暂的增加。在整个实验中,在 DMSO 处理的 T 细胞中没有观察到 340/380 比率的变化。然而,PA 处理的淋巴细胞迅速表现出该比率的增加,如 2D 图像、表面图(图 3A)或 kymographs(图 3B)所示。

340/380 信号的测量显示,PA 处理的细胞中的比率增加了 32.71 ± 0.07%,尽管 DMSO 处理的细胞中的比率保持稳定(图 3C)。这些发现验证了 PA 刺激后 γδ T 细胞的激活。
图 3:使用 Inscoper liveRATIO 通过比率成像监测的 T 细胞活化
(A) 用 DMSO 或磷酸抗原 (PA) 刺激用 Fura-2 标记的 γδ T 细胞的代表性图像。从每个虚线方块中提取曲面图。比例尺 = 100µm。 (B) Kymograph 表示荧光强度随时间的变化。黑色箭头表示在培养基中添加了 DMSO 或 PA。 (C) DMSO 或磷酸抗原对 Fura-2 标记的 γδ T 淋巴细胞诱导的钙波动。黑色箭头表示在培养基中添加了 DMSO 或 PA。数据根据平均值±SEM表示

参考文献:
 
1. Balagopalan L, Sherman E, Barr VA & Samelson LE (2011) Imaging
techniques for assaying lymphocyte activation in action. Nat Rev Immunol
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dynamics, homeostasis and remodelling. Nat Rev Mol Cell Biol 4:
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3. Berridge MJ, Lipp P & Bootman MD (2000) The versatility and universality
of calcium signalling. Nat Rev Mol Cell Biol 1: 11–21

4. Clapham DE (2007) Calcium Signaling. Cell 131: 1047–1058

5. Grienberger C & Konnerth A (2012) Imaging Calcium in Neurons.
Neuron 73: 862–885

6. Humeau J, Bravo-San Pedro JM, Vitale I, Nuñez L, Villalobos C, Kroemer
G & Senovilla L (2018) Calcium signaling and cell cycle: Progression
or death. Cell Calcium 70: 3–15

7. Paemeleire K, Martin PEM, Coleman SL, Fogarty KE, Carrington WA,
Leybaert L, Tuft RA, Evans WH & Sanderson MJ (2000) Intercellular
Calcium Waves in HeLa Cells Expressing GFP-labeled Connexin 43,
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8. Vig M & Kinet J-P (2009) Calcium signaling in immune cells. Nat Immunol
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9. Zumerle S, Calì B, Munari F, Angioni R, Di Virgilio F, Molon B & Viola
A (2019) Intercellular Calcium Signaling Induced by ATP Potentiates
Macrophage Phagocytosis. Cell Rep 27: 1-10
发布者:广州科适特科学仪器有限公司
联系电话:020-38102730
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