CD3分选试剂盒哪个好？FiniGet分必得®实测纯度数据与多品牌对比
CD3细胞分选、T细胞分选是免疫、肿瘤基础研究常用的原代细胞分离手段。FiniGet分必得®120-6001人CD3+T细胞负选试剂盒采用阴性分选技术，15分钟即可获得纯化T细胞，大限度避免目标细胞激活，适配细胞培养、分子检测、流式分析等各类下游实验。
我们整理了广东省内三甲医院、高校、重点实验室完成的部分代表性细胞分选Demo实验记录，所有操作严格遵循试剂盒官方说明书，每组实验都配套专属原始流式检测结果图，能直观看到不同样本条件下，使用FiniGet分必得®完成CD3分选后的纯度表现。文中同时收录多品牌平行对照实验数据，华南地区做免疫课题的科研人员，可借助这批可视化、可溯源的实测数据挑选适配的CD3分选试剂盒。
1. 分选试剂：FiniGet分必得®120-6001人CD3+T细胞负选试剂盒，也可以使用小规格型号120-6001-S
2. 分选原理：Cocktail会特异性结合非CD3杂细胞，再通过链霉亲和素磁珠吸附带走杂细胞，直接收集流出液即可得到高纯度CD3+T细胞，大限度避免目标细胞激活。
3. 配套磁力设备：FiniGet分必得®140-2000单孔磁力架、140-2002八联排磁力架，可适配不同细胞处理体量。
4. 鉴定抗体：FITC Mouse Anti-human CD3抗体（OKT-3、UCHT1两种克隆），用于流式上机检测分选纯度。
5. 测试样本：新鲜人PBMC、冻存复苏PBMC、全血裂红后单个核细胞
6. 统一操作规范：按照说明书完成PBMC制备、抗体孵育、磁珠结合、磁力分离全流程；冻存细胞分选前用DNase I打散细胞团块；红细胞含量偏高的样本，同步执行标准裂红步骤。
官方标准流式参考图
下图是使用本产品进行流式检测的结果，分选前PBMC中CD3阳性细胞占比60.4%，使用FiniGet分必得®完成CD3分选后，纯度达98.5%，可以作为CD3细胞分选的参照标准。
广东多家医院客户新鲜外周血分离PBMC后直接开展CD3分选，搭配FiniGet分必得®标准试剂配比，T细胞分选后流式纯度稳定维持97%～99.4%。
如果样本混杂大量血小板、红细胞，CD3分选纯度会小幅回落，按照说明书配套裂红流程预处理后，纯度可恢复至98%以上。
实验1：祈福医院C老师——新鲜PBMC分选前后流式对比
实验3：深圳工业——PBMC混样分选流式图（NeoMab CD3抗体鉴定）
实验5：南方医科大学珠江医院L老师——新鲜PBMC分选流式图（50%红细胞残留）
实验10：广东省人民医院H老师——新鲜PBMC分选流式图（高血小板样本）
冻存PBMC复苏后容易形成细胞团块，也是干扰T细胞分选纯度的常见问题。严格跟着试剂盒说明书操作，用100μg/mL DNase I室温孵育15分钟并过筛后，再用FiniGet分必得®开展分选，试剂盒分选效果受冻存周期影响较小。
冻存样本经过CD3分选，纯度稳定在96%～99.45%区间，仅细胞活性会随冻存时长轻微下降，对CD3阳性细胞富集无明显影响。
实验6：合作实验室——冻存PBMC分选流式图（复苏后活性优异）
实验7：合作实验室——冻存PBMC技术重复流式图（验证分选重复性）
实验11：深圳湾实验室P老师——冻存复苏PBMC分选流式图（分选后活性>95%）
中山大学附属第八医院的客户实测发现，红细胞污染严重会吸附磁珠，直接拉低FiniGet分必得®CD3分选纯度。
推荐标准化优化操作：取1mL专用裂红试剂重悬细胞，室温孵育3分钟，PBS洗涤一次后再孵育抗体、磁珠，即可有效消除红细胞干扰。
实验4：中山大学附属第八医院S老师——裂红/未裂红CD3分选对照流式图
在多组实验中，我们同步设置某进口品牌、另一国产品牌的平行对照组，采用同等细胞量、统一操作流程，直接对比CD3分选纯度表现。以下为汇总对比数据：
实验2中，深圳工业使用同一批新鲜PBMC设置平行对照，FiniGet分必得®分选纯度95.00%，某进口品牌纯度94%-95%，两者在标准样本条件下纯度接近。
实验10中，广东省人民医院H老师的样本含有大量血小板，属于高干扰条件。FiniGet分必得®分选纯度96.21%，某进口品牌仅89.00%，差距达7个百分点。在血小板富集等复杂样本条件下，FiniGet分必得®的杂细胞清除能力优势明显。
实验9中，中科院深圳院W老师使用冻存PBMC开展平行对照，FiniGet分必得®分选纯度99.00%，另一N品牌纯度95.00%，差距4个百分点。在冻存样本条件下，FiniGet分必得®的纯度稳定性更突出。
综合多组平行对比数据，在标准新鲜PBMC样本中，FiniGet分必得®与某S品牌纯度接近；在高血小板、冻存复苏等复杂样本条件下，FiniGet分必得®的纯度优势更为显著。
如需了解FiniGet分必得®完整产品线（人CD3/CD4/CD8/CD19/CD56分选试剂盒、磁力架、分选缓冲液），可访问FiniGet分必得®品牌专区；如需了解更多细胞分选技术方案与实验案例，可浏览技术专题页。
1. PBMC制备：Ficoll密度梯度离心分离外周血单个核细胞，PBS洗涤沉淀，重悬于FiniGet分必得®专用分选缓冲液，调整细胞密度至1×10⁸ cells/mL；冻存PBMC需DNase I打散团块+40μm细胞筛过滤。
2. 抗体孵育：每1×10⁷细胞添加10μL分选cocktail，轻柔混匀，室温孵育10分钟。
3. 磁珠孵育：每1×10⁷细胞添加8μL充分涡旋混匀的链霉亲和素磁珠，室温孵育2.5分钟。
4. 磁力分离：分选缓冲液补至2.5mL，流式管放置磁力架静置2.5分钟，平稳倾倒上清，流出液即为纯化CD3+T细胞。
5. 细胞重悬：按需洗涤细胞后，重悬于培养基或实验缓冲液，直接开展下游实验。
整体流程和方案A保持一致，磁力吸附静置时长调整为5分钟，用移液器吸取上清，不要直接倾倒流式管。
适合大样本批量细胞分选，同步按比例放大抗体、磁珠使用量，体系体积控制在5～10mL，磁力静置5分钟，吸取细胞时枪头避开管壁磁性吸附区域。
优先选用含1mM EDTA、2%胎牛血清的无菌PBS，或是FiniGet分必得®140-2001专用细胞分选缓冲液；缓冲液里不能添加钙离子、镁离子、游离生物素，这类物质会破坏磁珠与抗体结合，降低CD3分选纯度。
处理办法：执行FiniGet分必得®标准裂红操作流程，磁珠孵育完成后多增加一轮洗涤步骤，减少红细胞和磁珠的非特异性吸附。
处理办法：参照试剂盒说明书，DNase I室温孵育15分钟，细胞筛过滤去除团块后，再走完整套FiniGet分必得®细胞分选流程。
处理办法：全程使用低吸附离心管、低吸附吸头，吹打、倾倒动作尽量轻柔，减少机械损伤；需要细胞培养的实验，全部分选操作在无菌操作台内完成。
1. 整套FiniGet分必得®试剂全程2-8℃冷藏存放，切勿冷冻，有效期12个月；
2. 链霉亲和素磁珠使用前充分涡旋震荡30秒，禁止高速离心；
3. FiniGet分必得®这款细胞分选试剂盒仅用于科研场景，不能用于临床体外诊断；
4. 磁珠孵育过程中如果出现细胞沉淀，可以每2分钟轻弹管壁、轻柔吹打混匀。
文中汇总了广东区域多所高校、三甲医院使用FiniGet分必得®120-6001做CD3分选的实测纯度数据，搭配全套可溯源流式实验结果图，能直观看到这款试剂盒在新鲜、冻存、高红细胞PBMC样本下稳定的T细胞分选效果，同时在多品牌平行对比中展现出复杂样本条件下的纯度优势。文章另附标准化细胞分选纯度评估方案与操作流程，华南地区做免疫课题的科研人员，可作为试剂盒选型、日常实验操作的可视化参考。
想查看同系列产品实测内容，可以浏览FiniGet分必得®人CD4、人CD8、人B细胞、人NK细胞分选汇总案例；想看更多细胞分选技术方案与实验案例，可访问细胞分选技术专题。
广州总部支持FiniGet分必得®细胞分选免费Demo实测，有CD3分选、T细胞分选相关实验需求的华南课题组，都可以联系技术支持咨询。
