IRAK1和IRAK4是组织中广泛表达的经典激酶,而IRAK3是一种假激酶,只在骨髓细胞系中表达,缺乏激酶活性。迄今为止,没有传统小分子抑制剂靶向IRAK3,2020年,Degorce等报道了第一个选择性降解IRAK3靶点的PROTAC分子,但相关研究没有揭示降解后功能变化。IRAK3作为TLR通路的负调控因子,可能会降低先天免疫反应。在肿瘤微环境中,敲除IRAK3显示骨髓细胞功能增强以促进抗肿瘤响应。与肿瘤细胞共培养的单核细胞显示 TNF-α、IL-12 和 IRAK1 表达降低,但 IRAK3 表达增加。相反,与野生型 (WT) 树突状细胞(DCs) 相比,IRAK3-/-小鼠树突状细胞的促炎细胞因子表达增加,从而诱导 T 细胞反应并导致肿瘤生长抑制,降解IRAK3可能成为免疫肿瘤治疗中一个有吸引力新策略。IL-12是由活化的树突状细胞和巨噬细胞产出的主要促炎细胞因子,通过诱导促IFN-γ细胞因子,在促进Th1介导的抗肿瘤反应、T细胞活化和增殖中发挥重要作用。

通过CRISPR/Cas9基因编辑技术和PROTAC选择性降解IRAK3来研究后续DCs中功能和表型变化。根据下图在人单核细胞衍生的树突状细胞中基因编辑敲除IRAK3基因,采用基于毛细管电泳技术的Digital Western(也称为Simple Western Wes系统)验证基因敲除效率,2个供体显示完全敲除,另一个显示保留10% IRAK3蛋白表达,结果显示通过CRISPR/Cas9 RNP方法有效降低了DCs中IRAK3蛋白表达水平。敲除了IRAK3后,在脂多糖(LPS)刺激后,通过检测细胞上清液中细胞因子分泌水平,结果显示IL-12p40分泌显著增加,与对照相比,浓度增加了1.5到2倍。同时IL-12p70分泌也具有增长趋势,但IL-10没有影响。

采用PROTAC D-1和LPS处理的DCs中IL-12p40浓度增加与CRISPR/Cas9 KO实验结果一致的,证明了两种方法有效性,证明通过PROTAC蛋白降解剂对IRAK3靶点可成药性。通过深入了解研究IRAK3生物学,扩大了PROTAC分子降解靶点库,并支持了潜在治疗靶点的基因编辑缺失和化学降解之间的相关性。
本研究主要利用Digital Western Blot技术检测IRAK3靶蛋白表达水平,研究CRISPR/Cas9基因编辑技术和PROTAC蛋白降解技术处理后细胞蛋白表达,准确定量靶向蛋白降解研究过程量效关系。AbbVie公司研究再次证明了Digital Western Blot可快速地、可重复性精准定量内源性蛋白质表达,是PROTAC技术平台构建的必备技术。
PROTAC 是 Arvinas, Inc. 注册商标,其他商标和注册商标是其各自所有者的财产。
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参考文献
1. Rhyasen, G., Starczynowski, D. IRAK signalling in cancer. Br J Cancer 112, 232–237 (2015).
2. Ann Rowley, Brian S Brown, etc. Targeting IRAK3 for Degradation to Enhance IL-12 Pro-inflammatory Cytokine Production.ACS Chem Biol. 2022 May 17