肺由气道与肺泡两个解剖区域组成,二者在稳态与损伤后主要依靠本区域的前体细胞完成更新:气管以基底细胞为主,细支气管依赖club细胞与神经内分泌(NE)细胞,肺泡则依靠AT2细胞自我更新并分化为AT1细胞;位于支气管肺泡管连接处(BADJ)的支气管肺泡干细胞(BASCs)可同时向两侧贡献细胞。既往研究已证明气道来源的干细胞能够参与肺泡修复,但反向问题,即肺泡细胞能否跨越边界参与支气管修复,长期缺乏体内遗传学证据。关键障碍在于工具:常用的Sftpc-creER会同时标记AT2细胞与BASCs,而BASCs本身在损伤后即可转分化为club细胞,两类信号叠加,使AT2细胞的特异贡献难以区分。
为解决特异性问题,团队构建了五种互补的AT2示踪系统。AT2-tracer1(Sftpc-creER;R26-tdT;Scgb1a1-DTR-GFP)把白喉毒素受体与GFP敲入Scgb1a1位点,先用白喉毒素(DT)清除club细胞与BASCs,仅保留tdT标记的AT2细胞;AT2-tracer2(Scgb1a1-creER;Sftpc-dreER;R26-NR)利用Dre-rox与Cre-loxP双重组酶嵌套报告基因,使AT2细胞标记ZsGreen、club细胞与BASCs标记tdT,从而在BASCs耐受的萘损伤模型中把AT2细胞独立区分出来;此外还包括以Lamp3-creER标记AT2细胞的AT2-tracer4,以及由Sftpc-dreER;R26-RSR-tdT构成的AT2-tracer5等。多套系统相互印证,为结论提供了遗传学层面的支撑。
在白喉毒素清除模型与萘损伤模型中,AT2细胞均迁移进入细支气管,转分化为club细胞与纤毛细胞,也出现AT1细胞与未分化AT2细胞。定量结果显示:DT损伤后第4周,新生club细胞中有77.42%来源于AT2细胞;萘损伤后第4周,42.93%的再生club细胞为AT2来源;在可同时区分三种来源的R26-TLR双重组酶体系中,AT2细胞贡献了52.35%的再生club细胞,高于BASCs(26.66%)和原有club细胞自身扩增(14.89%)。迁移有两条路径:主要经BADJ(损伤后3至7天快速增加),也可经支气管壁上的通道(次要途径,萘损伤模型中未见)。单个AT2细胞即具备多向转分化能力。迁移过去的细胞并非短暂停留:6个月后仍可检出,二次损伤时还可继续增殖并转分化为纤毛细胞;单细胞多组学显示,AT2来源club细胞的AT2特征迅速下降,而club细胞的分泌与免疫相关特征持续增强,在转录与表观遗传层面逐步向天然club细胞靠拢。作为对照,气管内再生的club细胞基本来自基底细胞,远端细支气管中基底细胞仅贡献少量细胞,NE细胞的贡献约为4.59%,支持club细胞再生以AT2细胞与基底细胞为主、并具有区域特异性的判断。
图1. AT2 细胞在白喉毒素诱导的细支气管损伤后转分化为 club 细胞
机制层面,单细胞转录组与空间转录组分析显示,损伤后免疫细胞在细支气管腔及周围聚集并高表达SPP1,形成以细支气管为中心的趋化梯度;细支气管周围的AT2细胞通过表面整合素ITGB1感知SPP1并向损伤部位迁移,抑制SPP1或ITGB1均会明显削弱迁移。免疫细胞、AT2细胞与细支气管周围成纤维细胞分泌的基质金属蛋白酶(如MMP9、MMP14)可能参与细胞外基质重塑,为迁移与通道形成创造条件。到达损伤部位后,AT2细胞先进入一个以CLDN4为标志的中间状态:CLDN4+中间态细胞贡献了62.10%的新生club细胞,敲除Cldn4会使AT2细胞向club细胞(65.94%降至25.49%)与向AT1细胞(21.11%降至8.82%)的贡献同步下降。随后,邻近残留的纤毛细胞提供Notch配体JAG1,经Notch2/RBPJ通路驱动命运转换:在AT2细胞中敲除Rbpj或Notch2、清除纤毛细胞、或在纤毛细胞中敲除Jag1,均会显著减少AT2来源的club细胞(例如清除纤毛细胞后,AT2向club细胞的转化比例由25.71%降至3.84%)。
图5. 浸润的免疫细胞分泌 SPP1,引导 AT2 细胞向受损细支气管迁移
在功能层面,于AT2细胞中敲除Itgb1或Rbpj会削弱损伤后的修复,表现为支气管壁增厚、小气道通气下降等肺功能指标变化,提示club细胞的再生对维持气道结构与功能具有实际意义。这项工作也拓宽了对肺再生细胞来源的认识:目前针对气道修复的策略多聚焦气道原位干细胞,而AT2细胞提供了一种可被动员的替代来源;Notch通路则提示了潜在干预靶点,在体外激活Notch信号即可促进AT2向club细胞转变。需要说明的是,小鼠与人的肺结构存在差异,AT2向club细胞的转分化程序在人体中是否存在尚待验证;DT模型中两条迁移路径的划分带有一定主观性,通道形成的机制也仍有待进一步证实。
这项研究把“肺泡细胞能否修复支气管”这个问题向前推进了一步:AT2细胞并不只负责气体交换,在支气管受损时也会迁移过去、改变身份,参与气道上皮重建;SPP1、ITGB1与Notch组成的信号链,则为理解这种跨区域修复提供了可操作的分子线索,也提示了一条值得进一步验证的干预思路。研究中配套的遗传示踪工具小鼠,也为同类肺再生研究提供了可复用的模型基础。
相关阅读
一日双顶刊!周斌团队同日于《Cell》《Science》发表心血管领域突破性成果
Cell | 周斌团队建立体内细胞衰老的谱系示踪及功能研究技术
谱系示踪的难点——基因标记的异位表达如何避免?(上)
谱系示踪的难点——基因标记的异位表达如何避免?(下)
想搞懂谱系示踪课题设计,收藏这一篇就够了
关于我们
上海南方模式生物科技股份有限公司(Shanghai Model Organisms Center, Inc.,简称"南模生物"),成立于2000年9月,是一家上交所科创板上市高科技生物公司(股票代码:688265),始终以编辑基因、解码生命为己任,专注于模式生物领域,打造了以基因修饰动物模型研发为核心,涵盖多物种模型构建、饲养繁育、表型分析、药物临床前评价等多个技术平台,致力于为全球高校、科研院所、制药企业等客户提供全方位、一体化的基因修饰动物模型产品解决方案。
阅读原文