小鼠肺癌组织单细胞样本制备标准流程及步骤
浏览次数:200 发布日期:2026-8-21
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一、实验前准备-全套试剂耗材

二、样本取材及预处理

小鼠鼠肺癌免疫细胞分离步骤
将获取的新鲜肿瘤组织浸泡在预冷的组织保存液中,4℃保存及运输;
将肿瘤组织转移至含有预冷1×PBS缓冲液(abs962)进行清洗,并尽量去除肿瘤组织表面脂肪和结缔组织;
三、标准化组织解离步骤参考
1、组织消化解离


将清洗过的组织,剪碎成0.5-1 mm3左右的组织块,将组织块(约100 mg)转移至5 mL的离心管中,并加入1 mL解离液,将离心管置于37℃恒温培养箱中孵育30 min,每隔10 min可以上下颠倒离心管;孵育结束后,可以将解离好的组织混合液使用1 mL移液器缓慢吹打10-20次(注:尽量将组织剪碎,这样有助于解离液与组织充分接触,更好消化组织);
将孵育好的细胞悬液使用70 μm细胞筛网过滤至新的50 mL离心管中,加入3-5 mL含有10% FBS的RPMI-1640培养基缓冲液冲洗筛网并过滤;
2、Percoll密度梯度液配置(40%、80%)

40%Percoll溶液:Percoll细胞分离液与PBS缓冲液(10×)按体积比9:1混合,配制等渗100%Percoll母液。用100%Percoll母液和 RPMI1640/1×PBS按体积比4:6混合,配制40%等渗Percoll溶液。
80%Percoll溶液:Percoll细胞分离液与PBS缓冲液(10×)按体积比9:1混合,配制等渗100%Percoll母液。用100%Percoll母液和 RPMI1640/1×PBS按体积比8:2混合,配制80%等渗Percoll溶液。
3、Percoll 密度梯度提取目的细胞

将上述得到的细胞悬液在4℃,400 g条件下离心5 min,弃去上清,用4 mL的40% Percoll重悬细胞沉淀;
吸取2.5 mL的80% Percoll深入到新的15 mL离心管底部,试管稍微倾斜,将4 mL的40% Percoll与细胞的混悬液沿着管壁缓慢加入15mL离心管中,覆盖在80% Percoll溶液上面形成密度梯度;(注:不要破坏80%Percoll和40%Percoll与细胞混悬液的分界面,40%和80%Percoll现配现用。)
室温条件下800 g离心20 min,升速1,降速0;
离心结束后吸取中间层细胞至新的15mL离心管中,加入预冷的1×PBS缓冲液(abs962),上下颠倒混匀,4℃条件下400 g离心5 min,弃去上清;
细胞沉淀使用适量的细胞染色缓冲液(abs9475)重悬,得到的细胞悬液可用于后续实验操作。
四、流式结果展示

试剂盒将小鼠肺癌组织处理为单细胞悬液后AO/PI计数结果



试剂盒将小鼠肺癌组织处理为单细胞悬液后流式检测细胞活力、CD45、CD3、CD4、CD8a、CD11b、F4/80、Ly6C、Ly6G、CD326、CD31染色结果
实验所用试剂耗材
| 产品分类 |
产品编号 |
名称 |
规格 |
| 组织消化解离 |
abs50272 |
小鼠肺癌组织解离试剂盒 |
10T/25T |
| 筛网 |
abs7232 |
70um细胞筛网(200目,白色,底面过滤) |
50个/箱 |
| 免疫细胞预富集 |
abs9102 |
percoll |
100ml |
| 10XPBS缓冲液 |
abs961 |
PBS缓冲液(10×) |
500ml |
| 1640培养基 |
abs9484 |
RPMI 1640培养基(含L‑谷氨酰胺,不含HEPES) |
500ml |
| 红细胞裂解液(1×) |
abs9101 |
RBC Lysis Buffer |
100ml |
| 阻断FCR非特异性染色 |
S0B0599 |
Mouse FcR Blocking Reagent |
200T |
| 染色缓冲液 |
abs9475 |
Flow cytometry staining buffer |
500ml |
| 死活染料 |
559925 |
7‑AAD Staining Solution 2mL |
2ml |
| 流式鉴定 |
S0B1692 |
APC‑Cy7 Rat Anti‑Mouse CD45 Antibody (30‑F11) |
50T |
| 流式鉴定 |
S0B5160 |
PerCP‑Cy5.5 Rat Anti‑Mouse/Human CD11b Antibody (M1/70) |
50T |