小鼠肺脏组织样本中的巨噬细胞分选和鉴定步骤
浏览次数:165 发布日期:2026-8-19
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一、 组织样本处理全套试剂耗材

二、磁珠分选全套试剂耗材

三、小鼠肺脏组织解离与单细胞悬液制备
完整解离流程:取材与清洗 → 组织剪碎 → 酶消化处理 → 消化后过筛 → Percoll 密度梯度预富集 → 单细胞悬液质控。

四、磁珠阳性分选完整操作步骤
1. 磁珠孵育与分选柱润洗
1. 细胞悬液 400×g 离心 7 分钟,完全吸弃上清
2. 每 1×10^7 细胞加入 90μL 分选缓冲液重悬 Note:缓冲液用量根据细胞总体积等比例调整
3. 加入 20μL F4/80 Nanobeads 分选磁珠 Note:细胞量增大时,所有试剂体积按相同比例同步增加
4. 充分混匀后,2-8℃避光孵育 15min
5. 每 1×10^7 细胞加入 1mL 分选缓冲液洗涤,400×g 离心 7 分钟,完全吸弃上清
6. 用 500μL 分选缓冲液重悬细胞,最多可重悬 5×10^7 细胞
7. 将 L 型分选柱放入对应磁力分选器的磁场中,用 3mL 分选缓冲液润洗分选柱
2. 上样与洗脱
1. 将细胞悬液缓慢上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞,即阴性组分)
2. 用分选缓冲液洗涤柱子 3 次,每次 500μL,待柱内液体完全流空后再加入下一次
3. 合并所有流出液作为阴性组分;将分选柱移出磁场,放置在收集管上方
4. 向柱内加入 1mL 分选缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高细胞纯度,可更换新分选柱重复分选 1 次
五、分选后流式鉴定
通过流式细胞术对三类样本进行平行鉴定: 分选前总样本、分选后阳性成分、分选后阴性成分。

分选后阳性成分、分选后阴性成分


六、实验关键注意事项
1. 组织富集与死细胞处理
非免疫组织消化为单细胞悬液后,必须使用 Percoll 做预富集;若消化后死细胞占比较高,建议使用 Dead cell Removal kit 清除死细胞。
2. 缓冲液操作规范
分选缓冲液使用前需要超声去气;分选加样过程中避免产生气泡,若出现气泡需及时吸出。
3. 分选与染色细节
• 上样前,分选柱务必先用分选缓冲液润洗;若单次分选后纯度不足,建议进行二次分选
• 巨噬细胞高表达 Fc 受体,流式鉴定时必须使用 FcR 阻断剂做封闭处理,避免非特异性染色干扰结果
七、相关产品推荐
| 产品分类 |
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
| F4/80 有柱阳性分选磁珠 |
S0K0012 |
Anti‑F4/80 Nanobeads, mouse(RUO) |
1/2ml |
| 肺脏组织解离液 |
abs50092 |
小鼠肺脏组织解离试剂盒 |
10T |
| 分选架 |
S0D3005 |
MultiStand |
1pc |
| 分选器 |
S0D3001 |
Starter MagSep Separator (L) |
1pc |
| 分选柱 |
S0D3011 |
L Separation Columns |
25 Columns |
| 分选 Buffer |
S0D3018 |
Starter MagSep Separation Buffer |
250ml |
| 细胞筛网 |
abs7231 |
40um 细胞筛网(300 目,蓝色,底面过滤) |
50 个 / 箱 |
| 红细胞裂解液(1×) |
abs9101 |
RBC Lysis Buffer |
100ml |
| FcR 封闭试剂 |
S0B0599 |
Mouse FcR Blocking Reagent |
200T |
| 流式染色缓冲液 |
abs9475 |
Flow cytometry staining buffer |
500ml |
| 流式鉴定抗体 |
S0B5113 |
FITC Rat Anti‑Mouse F4/80 Antibody (S‑R537) |
50T |