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小鼠肺脏组织样本中的巨噬细胞分选和鉴定步骤

浏览次数:165 发布日期:2026-8-19  来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负
一、 组织样本处理全套试剂耗材

二、磁珠分选全套试剂耗材

三、小鼠肺脏组织解离与单细胞悬液制备
完整解离流程:取材与清洗 → 组织剪碎 → 酶消化处理 → 消化后过筛 → Percoll 密度梯度预富集 → 单细胞悬液质控。

四、磁珠阳性分选完整操作步骤
1. 磁珠孵育与分选柱润洗
1. 细胞悬液 400×g 离心 7 分钟,完全吸弃上清
2. 每 1×10^7 细胞加入 90μL 分选缓冲液重悬 Note:缓冲液用量根据细胞总体积等比例调整
3. 加入 20μL F4/80 Nanobeads 分选磁珠 Note:细胞量增大时,所有试剂体积按相同比例同步增加
4. 充分混匀后,2-8℃避光孵育 15min
5. 每 1×10^7 细胞加入 1mL 分选缓冲液洗涤,400×g 离心 7 分钟,完全吸弃上清
6. 用 500μL 分选缓冲液重悬细胞,最多可重悬 5×10^7 细胞
7. 将 L 型分选柱放入对应磁力分选器的磁场中,用 3mL 分选缓冲液润洗分选柱
2. 上样与洗脱
1. 将细胞悬液缓慢上样至分选柱,收集流出液(未标记细胞,即阴性组分)
2. 用分选缓冲液洗涤柱子 3 次,每次 500μL,待柱内液体完全流空后再加入下一次
3. 合并所有流出液作为阴性组分;将分选柱移出磁场,放置在收集管上方
4. 向柱内加入 1mL 分选缓冲液,用配套柱塞快速、用力推压,洗脱磁性标记的阳性细胞 Note:如需更高细胞纯度,可更换新分选柱重复分选 1 次

五、分选后流式鉴定
通过流式细胞术对三类样本进行平行鉴定: 分选前总样本、分选后阳性成分、分选后阴性成分。

分选后阳性成分、分选后阴性成分

六、实验关键注意事项
1. 组织富集与死细胞处理
非免疫组织消化为单细胞悬液后,必须使用 Percoll 做预富集;若消化后死细胞占比较高,建议使用 Dead cell Removal kit 清除死细胞。
2. 缓冲液操作规范
分选缓冲液使用前需要超声去气;分选加样过程中避免产生气泡,若出现气泡需及时吸出。
3. 分选与染色细节
• 上样前,分选柱务必先用分选缓冲液润洗;若单次分选后纯度不足,建议进行二次分选
• 巨噬细胞高表达 Fc 受体,流式鉴定时必须使用 FcR 阻断剂做封闭处理,避免非特异性染色干扰结果

七、相关产品推荐
产品分类 产品编号 产品名称 规格
F4/80 有柱阳性分选磁珠 S0K0012 Anti‑F4/80 Nanobeads, mouse(RUO) 1/2ml
肺脏组织解离液 abs50092 小鼠肺脏组织解离试剂盒 10T
分选架 S0D3005 MultiStand 1pc
分选器 S0D3001 Starter MagSep Separator (L) 1pc
分选柱 S0D3011 L Separation Columns 25 Columns
分选 Buffer S0D3018 Starter MagSep Separation Buffer 250ml
细胞筛网 abs7231 40um 细胞筛网(300 目,蓝色,底面过滤) 50 个 / 箱
红细胞裂解液(1×) abs9101 RBC Lysis Buffer 100ml
FcR 封闭试剂 S0B0599 Mouse FcR Blocking Reagent 200T
流式染色缓冲液 abs9475 Flow cytometry staining buffer 500ml
流式鉴定抗体 S0B5113 FITC Rat Anti‑Mouse F4/80 Antibody (S‑R537) 50T
发布者:上海优宁维生物科技股份有限公司
联系电话:15921930842
E-mail:yh-wang@univ-bio.com

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