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B细胞提取及纯化实验操作流程的介绍

浏览次数:357 发布日期:2026-7-1  来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负
B细胞在免疫发展中发挥中心作用。他们在骨髓中最初进入血液作为幼稚B细胞,其可以迁移到淋巴组织,诸如脾,淋巴结,扁桃体,为进一步发展,一些幼稚B细胞迁移到淋巴滤泡,其中生发中心B细胞可以分化成记忆B细胞和plasmablasts(PBS)/浆细胞(PC)的。虽然大多数PBS/PC最终进入血液,少数最终驻留在骨髓经受终端分化为长寿命的浆细胞。没有滋养层细胞增殖很少 ,部分细胞不会增殖,需要滋养层细胞培养。

先上B细胞的提取吧:
1. 静脉取血 2ml,加入含肝素溶液(50ug/ml血样本)的试管中,混匀,使血液抗凝。用 PBS溶液1:1稀释。
2、吸取 2ml 淋巴细胞分离液(启达生物,货号:SD0059)置于刻度离心管中,然后将离心管倾斜 45°角,用毛细滴管将稀释的全血沿管壁缓慢加至分离液上面,应注意保持两者界面清晰。
3、在 18℃~20℃下,使用水平离心机以 1500r/min 离心 20min。
4、小心取出离心管,用1ml移液器缓慢吸取第二层淋巴细胞,配平再次离心,若有红细胞,可多用PBS洗涤一次。
5、弃上清,将沉淀细胞悬于培养基中备用。

再来B细胞的纯化:
(a) 取1mg羧基磁珠(约100μl磁悬液,取用前超声充分混匀)于1.5ml Ep管中,涡旋振荡5-10min;

(b)取适量磁珠悬液,用 20 倍体积的 PBS+0.2%BSA 溶液重悬细胞后,置磁架上 5min,待磁珠完全被吸附

备注:(磁珠与单个核细胞或全血的比例为:0.5mg 磁珠/1×107 个单个核细胞或 1ml 全血);

(c)用移液器小心吸去上清,以去除在储存过程中从磁珠上脱落的二抗。用 100ul PBS+0.2%BSA 溶液重悬磁珠。加入一抗(一抗与磁珠的比例为:5ug 一抗/1mg 磁珠)混合均匀,室温条件,在样品混合仪上活化30min

(D)加入 2ml PBS+1.2%BSA 溶液,再置磁架上 5min。吸去上清,以去除未与二抗结合的一抗。重复操作一次。用 100ul PBS+0.2%BSA 溶液重悬磁珠。

(E)用B细胞完全培养基(启达生物,货号:P3901)调整待分离细胞的浓度为 1×107 细胞/ml,将细胞加入磁珠悬液中,置室温 15min,中间轻微晃动一次。然后置磁架上 10min。吸去上清。

(F)用B细胞完全培养基重悬磁珠结合的细胞后直接进行培养。
 
发布者:上海启达生物科技有限公司
联系电话:13012892256
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标签: B细胞 提取 纯化
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