大脑作为高能耗器官,线粒体自噬是维持线粒体稳态的核心机制,但其在脑衰老过程中的细胞特异性动态变化,始终缺乏活体生理状态下的直接观测数据。本研究借助双光子活体成像技术与线粒体靶向mt-Keima荧光探针,在清醒雄性小鼠体感皮层中,分别定量检测神经元与星形胶质细胞的线粒体自噬水平,对比年轻与老年个体的差异,并验证NAD+前体烟酰胺核糖对衰老相关线粒体自噬下降的改善作用,为脑衰老的线粒体质量调控研究提供了活体层面的核心证据。
该研究由Beatriz Escobar-Doncel、Xiaoyi Zhang等学者共同完成,论文题为Two-photon in vivo imaging reveals cell type-specific mitophagy dynamic changes in mouse somatosensory cortex during aging,于2026年5月正式接收,发表于npj Aging期刊。
重要发现
01双光子mt-Keima成像的激发条件校准
mt-Keima是一种定位于线粒体的比率型荧光蛋白,其发色团的质子化状态随环境pH改变:中性条件下单光子激发峰约为440nm,酸性条件下红移至约590nm,发射波长均稳定在620nm,因此可通过荧光信号的变化特异性指示线粒体进入溶酶体的自噬降解进程。针对双光子激发下酸性环境的光学参数缺失、且双波长顺序扫描难以适配活体动态成像的技术难点,研究团队在稳定表达mt-Keima的细胞系中,对800nm至900nm区间的双光子激发效果进行系统测试,最终确定800nm为最优激发波长。该波长下酸性环境的mt-Keima荧光信号达到峰值,中性环境下信号强度极低,可最大程度富集功能性线粒体自噬溶酶体的有效信号,无需双波长比率成像即可实现活体层面的线粒体自噬水平半定量检测,为后续在体实验建立了稳定的技术基础。
创新与亮点
本研究突破了既往脑线粒体自噬研究高度依赖离体固定组织、无法保留活体生理状态与动态调控信息的核心局限,建立了适配活体小鼠脑的单波长双光子mt-Keima成像方案。该方案通过优化激发波长,解决了双光子双波长扫描在清醒动物成像中操作难度大、时间分辨率不足的技术难点,同时结合细胞特异性启动子的病毒递送系统,首次实现了活体脑内神经元与星形胶质细胞两类细胞线粒体自噬水平的实时、精准定量检测。
该技术在光学生物医疗领域具备明确应用价值:在脑衰老与神经退行性疾病研究中,可实现同一动物的纵向活体监测,避免离体实验的生理背景丢失;在抗衰老药物筛选中,可直接在活体层面评估干预靶点的线粒体自噬激活效应,提升药效评价的生理相关性,为脑代谢相关疾病的机制研究与药物研发提供了全新的在体成像工具。
总结与展望
综上,本研究通过双光子活体成像证实,小鼠体感皮层的神经元与星形胶质细胞均存在衰老相关的线粒体自噬水平下降,且星形胶质细胞的基础自噬水平显著更高,NAD+前体烟酰胺核糖补充可有效逆转这一衰老相关衰退。未来可进一步拓展至性别差异、小胶质细胞等其他细胞类型及更多脑区的研究,结合线粒体功能检测与行为学评估明确线粒体自噬变化与脑功能衰退的关联,推动相关干预策略的转化应用。
DOI:10.1038/s41514-026-00414-5.