细胞凋亡检测实验原理及操作步骤
浏览次数:364 发布日期:2022-4-6
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实验原理:
本实验用1μg/ml 三尖杉酯碱HT在体外诱导培养的HL-60细胞发生凋亡,同时也有少数细胞发生坏死。用Hoechst33342和碘化丙啶(propidium iodide,PI)对细胞进行双重染色,可以区别凋亡、坏死及正常细胞。
三尖杉酯碱(HT)是我国自行研制的一种对急性粒细胞白血病,急性单核白血病等有良好疗效的抗肿瘤药物。研究表明HT在0.02~5μg/ml范围内作用2小时,即可诱导HL-60细胞凋亡,并表现出典型的凋亡特征。
细胞膜是一选择性的生物膜,一般的生物染料如PI等不能穿过质膜。当细胞坏死时,质膜不完整,PI就进入细胞内部,它可嵌入到DNA或RNA中,使坏死细胞着色,凋亡细胞和活细胞不着色。而一些活细胞染料由于为亲脂性物质,可跨膜进入活细胞,因而可进行活细胞染色。Hoechst33342是一种活性荧光染料且毒性较弱,它是双苯并咪唑的一种衍生物。与DNA特异结合(主要结合于A-T)碱基区),显示凋亡细胞和活细胞。凡是看到有凋亡小体的细胞都是凋亡细胞。
实验步骤:
一、试剂准备
1. 三尖杉酯碱(HT):300μg/ml;
2. Tris-HCl(pH7.5):100mmol/L;
3. EDTA缓冲液:5mol/L;
4. 碱性裂解液:0.2mol/L NaOH;
5. 醋酸钠:3mol/L KAc(pH4.8);
6. PI母液:500μg/ml;
7. Ho33342母液:2mmol/L;
8. 人早幼粒白血病HL-60细胞:用含10%小牛血清的RPMI1640培养基在37℃,5% CO2条件下培养。
9. 其他:异丙醇、1%SDS、70%乙醇、溴酚蓝、蔗糖指示剂、TBE电泳缓冲液、1%琼脂糖、溴乙锭。
二、三尖杉酯碱诱发HL-60细胞凋亡
1. 实验前约24小时,接种两瓶HL-60细胞,标记①、②,每瓶含约6 ml培养液,置37℃,5%CO2培养箱培养。
2. 实验前约2.5小时,当细胞密度达到70%,①号瓶加入三尖杉酯碱200 μl,使终浓度为1 μg/ml,②号瓶中加入同等量PBS(pH7.4)作对照。共同放入培养箱中继续培养2.5小时。
3. Ho33342和PI双重染色鉴别三种细胞
(1)染色:将瓶中的细胞摇匀取200 μl于1.5 ml的离心管中,加入Ho33342母液2 μl,PI 20 μl,染色15分钟。
(2)滴片:取一载玻片用双面胶围成一小室,从离心管中各取以上染色后的细胞悬液10 μl,加入小室内盖上盖玻片,荧光镜下用紫外激发光,高倍镜下观察,区别三种细胞,并注意三者比例。
注意事项:
1. 诱导培养HL-60细胞时间要准确;
2. 荧光显微镜下观察细胞时,由于荧光易碎灭,观察时要尽量快。