培养操作要点
基础培养基选择:分为天然培养基、合成培养基(如DMEM、RPMI 1640)和无血清培养基。目前以合成培养基和无血清培养基使用居多。
培养条件设置:
温度:多数人和哺乳动物细胞为36-37℃,昆虫细胞为27℃。
pH值:多数哺乳动物细胞为7.4,昆虫细胞为6.2。
CO₂浓度:通常维持5-7% CO₂,多数细胞适合5% CO₂气氛。
渗透压:控制在260-341mOsm/kg为宜。
| 产品名称 |
JF-305人胰腺癌细胞 |
种属 |
人 |
| 英文名 |
JF-305 |
规格 |
1 × 10⁶ cells/T25 |
| 货号 |
LZ-01X778 |
组织来源 |
胰腺 |
商品介绍
产品名称:JF-305人胰腺癌细胞
英文名称:JF-305
细胞特性
来源:胰腺
形态:上皮细胞样,贴壁生长
含量:>1x106个/mL
污染:支原体、、酵母和检测为阴性
规格:T25瓶或者1mL冻存管包装
细胞活性检测
这类方法主要用于评估细胞的增殖能力、代谢活性或杀伤功能等。
细胞增殖检测:
DNA合成标记法:如BrdU法,通过检测细胞在增殖时掺入DNA的胸腺嘧啶类似物来反映增殖活性。
代谢活性检测法:如MTT法、CCK-8法,通过检测活细胞线粒体的代谢活性,间接反映活细胞数量。
细胞毒性/杀伤检测:
乳酸脱氢酶 (LDH) 释放法:细胞膜受损后,细胞内的LDH会释放到培养基中,通过检测上清液中LDH的活性来评估细胞毒性。
72Cr释放法:用放射性同位素标记靶细胞,当效应细胞(如NK细胞)杀伤靶细胞后,放射性物质释放,通过测定其放射活性来计算杀伤率。
细胞冻存 (慢冻)
细胞冻存的目的是使细胞在超低温环境下(如液氮)进入休眠状态,以实现长期保存。关键在于缓慢降温,使细胞内的水分有足够时间渗出,从而减少细胞内冰晶的形成。
1. 冻存前准备
细胞状态:选择处于对数生长期、活力良好(存活率 >80%)、无污染的细胞进行冻存。此时的细胞代谢旺盛,对抗冻存损伤的能力更强。
冻存液配置:常规冻存液由冷冻保护剂(如10% DMSO)和冻存基质(如90% 胎牛血清或完全培养基)组成。DMSO等保护剂能提高细胞膜对水的通透性,帮助细胞内水分渗出,降低冰点,从而减少冰晶形成。
2. 标准操作流程
收集细胞:对于贴壁细胞,使用胰蛋白酶等消化液将其从培养皿上消化下来;悬浮细胞则可直接收集。通过离心去除旧的培养基。
重悬计数:弃去上清液,用配置好的冻存液重悬细胞沉淀,并进行细胞计数。
调整密度:根据细胞类型调整细胞浓度,通常推荐的冻存密度为 1×10⁶ 至 1×10⁷ 个细胞/毫升。
分装:将细胞悬液分装至专用的耐低温冻存管中,通常每管1-2毫升,并在管壁上清晰标记细胞名称、冻存日期、操作者等信息。
程序降温:
标准方法:使用程序降温盒(通常内含异丙醇)或程序降温仪,以 -1℃/min 的速率逐步降温至 -80℃。这个过程通常需要过夜。
替代方法:若无专业设备,可将冻存管放入4℃冰箱30分钟,再转入-20℃冰箱2小时,最后放入-80℃冰箱过夜。
长期保存:程序降温后,应尽快将冻存管转移至 液氮罐(-196℃) 的气相或液相中进行长期保存。若仅存放在-80℃冰箱,保存期限通常不超过6个月。
)🔥 细胞复苏
细胞复苏的目的是将休眠的细胞快速恢复到正常生长温度,同时避免冰晶在融化过程中重新形成,对细胞造成二次损伤。
1. 标准操作流程
快速解冻:从液氮罐中取出冻存管后,立即放入 37℃ 温水浴中,并不时轻轻晃动,使其在 1分钟内 迅速融化。
转移稀释:待细胞悬液完全融化后,用70%乙醇擦拭冻存管消毒,然后在超净台内打开,将细胞悬液缓慢加入含有预热培养基的离心管中,轻轻混匀。培养基的体积应为冻存液体积的10倍以上,以稀释并降低冻存液(如DMSO)的毒性。
离心换液:以1000 rpm离心5分钟,弃去上清液(含冻存液)。然后用新鲜的完全培养基重悬细胞沉淀。
接种培养:将重悬后的细胞接种到合适的培养容器中,放入37℃、5% CO₂的培养箱中静置培养。
更换培养基:建议在复苏后24小时更换一次新鲜培养基,以彻底去除残留的冻存液和死亡细胞碎片,然后继续培养。
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