培养操作要点

基础培养基选择:分为天然培养基、合成培养基(如DMEM、RPMI 1640)和无血清培养基。目前以合成培养基和无血清培养基使用居多。
培养条件设置:
温度:多数人和哺乳动物细胞为36-37℃,昆虫细胞为27℃。
pH值:多数哺乳动物细胞为7.4,昆虫细胞为6.2。
CO₂浓度:通常维持5-7% CO₂,多数细胞适合5% CO₂气氛。
渗透压:控制在260-333mOsm/kg为宜。
商品介绍

| 产品名称 |
HCC2935人非小细胞肺癌细胞 |
货号 |
LZ-X968887 |
| 英文名 |
HCC2935 |
规格 |
1 × 10⁶ cells/T25 |
产品名称:HCC2935人非小细胞肺癌细胞
英文名称:HCC2935
种属来源:人
性别年龄: 39 岁,男性
组织来源:肺
生长特性: 贴壁生长
细胞形态: 上皮细胞样
细胞规格: 1 X 10 6cells/T25 或 1 mL 冻存管
培养条件: PMI1640 +10%fetal bovine serum37 ℃, 5% CO2
冻存条件: 90% FBS + 10% DMSO
传代方法:1:3 传代, 2-3 天传 1 代
细胞活性检测

这类方法主要用于评估细胞的增殖能力、代谢活性或杀伤功能等。
细胞增殖检测:
DNA合成标记法:如BrdU法,通过检测细胞在增殖时掺入DNA的胸腺嘧啶类似物来反映增殖活性。
代谢活性检测法:如MTT法、CCK-8法,通过检测活细胞线粒体的代谢活性,间接反映活细胞数量。
细胞毒性/杀伤检测:
乳酸脱氢酶 (LDH) 释放法:细胞膜受损后,细胞内的LDH会释放到培养基中,通过检测上清液中LDH的活性来评估细胞毒性。
64Cr释放法:用放射性同位素标记靶细胞,当效应细胞(如NK细胞)杀伤靶细胞后,放射性物质释放,通过测定其放射活性来计算杀伤率。
细胞培养操作流程主要包含以下几个关键步骤:
🧫 准备工作
所有与细胞接触的物品,如培养基、培养皿、移液管等,都必须经过严格的灭菌处理,确保无菌。实验开始前,需用75%乙醇擦拭生物安全柜台面,并准备好所需试剂和耗材。
🌱 细胞复苏
- 快速融化: 从液氮中取出冻存管,立即放入37℃水浴中,轻轻晃动,使其在1分钟内快速融化。
- 转移与稀释: 将融化的细胞悬液转移至含预热完全培养基的离心管中,轻轻混匀,以稀释保护剂DMSO。
- 离心与重悬: 离心后弃去上清液,用新鲜培养基重悬细胞沉淀。
- 培养: 将细胞接种到培养瓶中,放入37℃、5% CO₂的培养箱中静置培养。
📈 细胞传代
当细胞生长至培养瓶表面70-90%汇合度时,需进行传代以获得更多的细胞。
- 贴壁细胞:
- 消化: 吸弃旧培养基,用PBS缓冲液润洗后,加入胰酶(Trypsin)溶液,在37℃下消化1-5分钟,显微镜下观察到大部分细胞变圆脱落时,立即加入含血清的培养基终止消化。
- 吹打与计数: 轻轻吹打使细胞完全脱落,制成单细胞悬液,进行计数。
- 接种: 按一定比例(如1:3, 1:5)将细胞悬液接种到新的培养瓶中,补充新鲜培养基后放回培养箱。
- 悬浮细胞:
- 直接传代: 当细胞密度高、培养基变黄时,可直接将部分细胞悬液转移至新瓶,补充新鲜培养基即可。
- 离心传代: 若需去除细胞碎片,可将细胞悬液离心,弃去部分上清或全部上清后,用新鲜培养基重悬细胞,再按比例接种到新瓶中。
💧 换液
目的是为细胞补充营养并清除代谢废物。
- 贴壁细胞: 直接吸弃旧培养基,加入预热的新鲜完全培养基即可。
- 悬浮细胞: 将细胞悬液离心,弃去旧培养基(上清液),用新鲜培养基重悬细胞沉淀。
换液频率一般为2-3天一次,具体根据细胞密度和培养基颜色调整。
❄️ 冻存
用于长期保存细胞。
- 收集细胞: 收集处于对数生长期的细胞,离心。
- 配制冻存液: 用冻存液(常用含10% DMSO和20%胎牛血清的完全培养基)重悬细胞。
- 程序降温: 将细胞分装至冻存管,放入程序降温盒中,于-80℃冰箱过夜。
- 长期保存: 次日将冻存管转移至液氮罐中长期保存。
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